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免疫荧光实验操作指南

2021-12-02
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该免疫荧光实验方法仅供参考,由于每个实验使用的试剂不同,并且涉及不同的物种,组织类型及实验应用,实验人员设计应根据具体情况设计实验步骤和改良。


-切片制备


A. 细胞涂片


将培养的细胞生长于无菌的盖玻片或载破片上,37℃过夜孵育。


用PBS简单洗涤。


按需固定. 可用的步骤有:


含10% 福尔马林的PBS 固定10分钟 (保持湿润).


冰冷的甲醇固定5分钟,自然干燥。


冰冷的丙酮固定5分钟,自然干燥。


用PBS冲洗。


B. 冷冻组织切片


在液氮或用液氮预冷的异戊烷中切割冷冻的新鲜组织, 放置于含有OCT冻存液的cryomolds被膜中. 速冻后保存在 – 80 ?C。


用恒冷箱切片机将组织切成4-8 um 厚的切片,然后固定在急冻切片或明胶包被过的切片。使用前将切片保存于 – 80℃。


染色之前,将切片置于室温下 30分钟然后于冰冷的丙酮中固定5分钟。自然干燥30分钟。


在PBS中漂洗。


C. 石蜡组织切片


将切片在二甲苯中去石蜡两次,每次5min.


使用100% 乙醇水化两次,每次3min.


使用95%乙醇水化 1min.


蒸馏水漂洗.


按需根据预制备步骤操作.


-组织切片预制备


*对于非石蜡包埋的冷冻切片和培养细胞,请不要使用该预制备步骤。


被福尔马林固定和石蜡包埋封闭的抗原决定簇可以使用抗原修复剂、酶消化或肥皂精等来使之显示。


-步骤


在PBS-Tween 20 中漂洗切片两次,每次2分钟。


血清封闭: 用正常血清封闭孵育切片 – 物种来源应与二抗相同, 孵育30分钟来封闭非特异的免疫球蛋白结合。 注意:由于该实验使用的 avidin-biotin 检测系统, 根据组织类型不同,可能需要avidin/biotin 封闭,avidin/biotin 封闭应在正常血清封闭之后。


一抗: 在一抗溶液中孵育切片,室温下1小时或4℃过夜。


在PBS-Tween 20中漂洗。


二抗: 在生物素化二抗溶液中孵育切片,室温下30分钟。


用PBS-Tween 20 漂洗三次,每次2分钟。


检测: 在含FITC-Avidin D 的PBS溶液中孵育切片,室温下30分钟。从该步骤开始要确保切片避光,直到最后将切片用铝箔纸包裹或放进避光盒子中。


用PBS-Tween 20 漂洗三次,每次2分钟。


如需要,用PI 或 DAPI 复染色。


在PBS-Tween 20中漂洗。


用95% 乙醇脱水 2 分钟, 100% 乙醇脱水两次,每次3分钟。


用抗褪色固定介质覆盖切片。



如需了解更多免疫荧光实验操作问题及免疫荧光相关产品,请联系欣博盛生物~


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